Revisão sobre o diagnóstico de afogamento com o uso do plâncton: teste de diatomáceas e de PCR

Abstract

Resumo

Afogamento é uma causa muito comum de morte em países como o Brasil, que possuem um extenso manancial hídrico. No entanto, o diagnóstico de morte por afogamento é considerado um dos mais difíceis da ciência forense, pois os sinais comuns utilizados na autópsia podem não estar presentes ou desaparecem rapidamente. Assim, o diagnóstico através do plâncton foi desenvolvido para auxiliar na investigação médico-legal de morte por afogamento. Organismos planctônicos, tais como microalgas podem ser encontrados nos órgãos internos de vítimas de afogamento por serem inaladas juntamente com a água, passando à circulação sanguínea através de pequenas lesões nos alvéolos pulmonares. O teste de diatomáceas trata da análise quantitativa e qualitativa de algas diatomáceas presentes nos tecidos internos das vítimas. A técnica de PCR visa identificar DNA planctônico no sangue e tecidos das vítimas através da confecção de primers de acordo com a comunidade planctônica presente no meio do afogamento. Este estudo apresenta uma revisão das técnicas atuais utilizadas na área da investigação forense de afogamentos, bem como discussões de autores consagrados na área de biologia e genética forense sobre a validade e utilidade do teste de diatomáceas e da técnica de PCR para o diagnóstico de morte por afogamento.

Riferimenti bibliografici

  1. D. Szpilman. Afogamento. Retirado em 06/02/2008, de http://www.fac.org.ar/scvc/llave/PDF/szpilmap.PDF.
  2. A.H. Idris; R.A. Berg; J. Bierens; L. Bossaert; C.M. Branche; A. Gabrielli; S.A. Graves; A.J. Handley; R. Hoelle; P.T. Morley; L. Papa; P.E. Pepe; L. Quan; D. Szpilman; J.G. Wigginton; JH. Modell. Recommended Guidelines for Uniform Reporting of Data From Drowning: The "Utstein Style". Circulation. 108: 2565-2574 (2003).
  3. A.J. Peabody. Forensic science and diatoms. In: J.P. Smol; E.F. Stoermer. The diatoms: Applications for the environmental and earth sciences. Cambridge University Press (1999).
  4. M.H.A. Piette; E.A. De Letter. Drowning: still a difficult autopsy diagnosis. Forensic Sci Int. 163(1): 1-9 (2006).
  5. B. Ludes; M. Coste. Diatomées et médicine légale: Applications de la recherche des diatomées au diagnostique de la submersion vitale. Tec & Doc (Lavoisier): France (1996).
  6. B. Ludes; M. Coste; A. Tracqui; P. Mangin. Continuous river monitoring of the diatoms in the diagnosis of drowning. J Forensic Sci. 41(3): 425-428 (1996).
  7. B. Ludes; M. Coste; N. North; S. Doray; A.Tracqui; P. Kintz. Diatom analysis in victim’s tissues as an indicator of the site of drowning. Int J Legal Med. 112(3): 163-166 (1999).
  8. M. Ming; X. Meng; E. Wang. Evaluation of four digestive methods for extracting diatom. Forensic Sci Int. 170(1): 29-34 (2007).
  9. M.S. Pollanen; C. Cheung; D.A. Chiasson. The diagnostic value of the diatom test for drowning, I. Utility: A retrospective analysis of 771 cases of drowning in Ontario, Canada. J Forensic Sci. 42(2): 281-285 (1997).
  10. M.S. Pollanen; C. Cheung; D.A. Chiasson. The diagnostic value of the diatom test for drowning, II. Validity: Analysis of diatom in bone marrow and drowning medium. J Forensic Sci. 42(2): 286-290 (1997).
  11. J. Hürlimann; P. Feer; F. Elber; K. Niederberger; R. Dirnhofer; D. Wyler. Diatom detection in the diagnosis of death by drowning. Int J Legal Med. 114(1-2): 6-14 (2000).
  12. M. Kane; T. Fukunaga; H. Maeda; K. Nishi. The detection of picoplankton 16S rDNA in case of drowning. Int J Legal Med. 108(6): 323-326 (1996).
  13. M. Kane; Y. Yamamoto; I. Ushiyama; A Nishimura; K. Nishi, K. Phylogenetic analysis of picoplakton in lake Biwa and application to legal medicine. Electrophoresis. 21(2): 351-354 (2000).
  14. S. Abe; M. Suto; H. Nakamura; H. Gunji; K. Hiraiwa; T. Suzuki; T. Itoh; H. Kochi; G. Hoshiai. A novel PCR method for identifying in cases of death by drowning. Med Sci Law. 43(1): 23-30 (2003).
  15. M. Suto; S. Abe, S; M. Nakamura; T. Suzuki; T. Itoh; H. Kochi; K. Hiraiwa. Detection of phytoplakton genes by PCR. Res Pract Forens Med. 44: 79-84 (2001).
  16. M. Suto; S. Abe, S; M. Nakamura; T. Suzuki; T. Itoh; H. Kochi; K. Hiraiwa. Detection of phytoplankton genes by PCR from human tissue. Res Pract Forens Med. 45: 93-98 (2002).
  17. M. Suto; S. Abe, S; M. Nakamura; T. Suzuki; T. Itoh; H. Kochi; K. Hiraiwa. Phytoplankton gene detection in drowned rabbits. Legal Medicine. 5: 142-144 (2003).
  18. F. He; D. Huang; L. Liu; X. Shu; H. Yin; X. Li. A novel PCR–DGGE-based method for identifying plankton 16S rDNA for the diagnosis of drowning. Forensic Sci Int. 176(2-3): 152-156 (2008).
  19. G. Muyzer; E.C. de Waal; A.G. Uitterlinden. Profiling of complex microbial populations by denaturing gradient gel electrophoresis analysis of polymerase chain reaction-amplified genes coding for 16S rRNA. Appl Environ Microbiol. 59(3): 695-700 (1993).
  20. D. DiMaio; V.J.M. DiMaio. Forensic pathology. 2. ed. CRC Press, Boca Raton (2001).
  21. S. Krstic; A. Duma; B. Janevska; Z. Levkov; K. Nikolova; M. Noveska. Diatoms in forensic expertise of drowning – a Macedonian experience. Forensic Sci Int. 127(3): 198-203 (2002).
  22. D. Dolinak; E. Matshes; E.O. Lew. Forensic Pathology: principles and practice. 2. ed. Elsevier/Academic Press (2005).
  23. S.A. Papadodima; S.A. Athanaselis; E. Skliros; C.A. Spiliopoulou. Forensic investigation of submersion deaths. Int J Clin Pract. 64(1): 75-83 (2009).
  24. Y. Li; C. Hu; C.X. Wang; X. Wang. Development of can for destruction of organic material in use for forensic diatom examination. Forensic Sci. Int. 101(3): 163-166 (1999).
  25. B. Ludes; S. Quantin; M. Coste; P. Mangin. Application of a simple enzymatic digestion method for diatom detection in the diagnosis of drowning in putrified corpses by diatom analysis. Int J Legal Med. 107(1): 37-41 (1994).
  26. L. Sidari; N. Di Nunno; F. Constantinides. Diatom test with Solueno-350 to diagnose drowning in sea water. Forensic Sci Int. 103(1): 61-5 (1999).
  27. A. Auer. Qualitative diatom analysis as a tool to diagnose drowning. Am J Forensic Med Pathol. 12(3): 213-218 (1991).
  28. S.C. Rodrigues; L. Torgan; A. Schwarzbold. Composição e variação sazonal da riqueza do fitoplâncton na foz de rios do delta do Jacuí, RS, Brasil. Acta Bot Bras. 21(3): 707-721 (2007).
  29. K. Ago; T. Hayashi; M. Ago; M. Ogata. The number of diatoms recovered from the lungs and other organs in drowning deaths in bathwater. Legal Medicine. 13:186-190 (2011).
  30. M.S. Pollanen. Diatoms and homicide. Forensic Sci Int. 91(1): 29-34 (1998).
  31. J.V. Pachar; J.M. Cameron. The diagnosis of drowning by the quantitative and qualitative analysis of diatoms. Med Sci Law. 33(4): 291-299 (1993).
  32. M. Yoshimura; M. Yoshida; Y. Okii; T. Tokiyasu; T. Watabiki; A. Akane. Detection of green algae (Chlorophyceae) for the diagnosis of drowning. Int J Legal Med. 108(1): 39-42 (1995).
  33. L.Y. Yen; P.T. Jayaprakash. Prevalence of diatom frustules in non-vegetarian foodstuffs and its implications in interpreting identification of diatom frustules in drowning cases. Forensic Sci Int. 170:1-7 (2007).
  34. K.L. Gruspier; M.S. Pollanen. Limbs found in water: investigation using antropologycal analysis and the diatom test. Forensic Sci Int. 112(1): 1-9 (2000).
  35. F. Bortolotti; G. Del Balzo; R. Calza; R. Valerio; F. Tagliaro. Testing the specificity of the diatom test: search for false-positives. Med Sci Law. 51(1): 7-10 (2011).
  36. P. Lunetta; A. Miettinen; K. Spilling; A. Sajantila. False-positive diatom test: A real challenge? A post-mortem study using standardized protocols. Legal Medicine. 15: 229-234 (2013).
  37. C. S. Reynolds. Ecology of phytoplankton. Cambrigde University Press (2006).
  38. I.M. Suthers; D. Rissik (Eds.). Plankton: A guide to their ecology and monitoring for water quality. Csiro Publishing: Australia (2009).
  39. Q.Y. Yan; Y.H. Yu; W.S. Feng; W.N. Deng; X.H. Song. Genetic diversity of plankton community as depicted by PCR-DGGE fingerprinting and its relation to morphological composition and environmental factors in lake Donghu. Microb Ecol. 54(2): 290-297 (2007).
  40. L. Wu; Y. Yuhe; T. Zhang; W. Feng; X. Zhang; W. Li. PCR-DGGE Fingerprinting analysis of plankton communities and its relationship to lake trophic status. Internat Rev Hydrobiol. 94(5): 528-541 (2009).
  41. E.J. Van Hannen; M.P. Van Agterveld; H.J. Gons; H.J Laanbroek. Revealing genetic diversity of eukaryotic microorganisms in aquatic environments by denaturing gradient gel electrophoresis. J Phycol. 34: 206-213 (1998).
  42. M. Aoyagi; K. Iwadate; K. Fukui; S. Abe; K Sakai; K. Maebashi; E. Ochiai; M. Nakamura. A novel method for the diagnosis of drowning by detection of Aeromonas sobria with PCR method. Legal Medicine. 11: 257-259 (2009).
  43. M. Suto; N. Kato; S. Abe; M. Nakamura; R. Tsuchiya; K. Hiraiwa. PCR detection of bacterial genes provides evidence of death by drowning. Legal Medicine. 11: 354-356 (2009).
  44. N.I. Maidana. El test de diatomeas en el diagnóstico de muerte por sumersión. Acta Nova. 6(1-2): 70-81 (2013).
  45. P.A. Díaz-Palma; A. Alucema; G. Hayashida; N.I. Maidana. Development and standardization of a microalgae test for determining deaths by drowning. Forensic Sci. Int. 184: 37-41 (2009).
Creative Commons License

Questo lavoro è fornito con la licenza Creative Commons Attribuzione - Non commerciale - Condividi allo stesso modo 4.0 Internazionale.

Copyright (c) 2014 Revista Brasileira de Criminalística

##plugins.themes.gdAlphaUK.general.share##

##plugins.themes.gdAlphaUK.download##

PDF (Português (Brasil))

##plugins.themes.gdAlphaUK.article.Authors##

  • Leticia Donadel,
  • Nelsa Cardoso,
  • A. Hoenisch,
  • Laura Roberta Pinto Utz,

    • Leticia Donadel

    Especialista em Biologia e Genética Forense, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (RS), Brasil.

    Nelsa Cardoso

    PONTIFICIA UNIVERSIDADE CATOLICA DO RIO GRANDE DO SUL (PUCRS)

    Professora Orientadora do Curso de Especialização em Biologia e Genética Forense – Departamento de Biodiversidade e Ecologia, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (RS), BrasilBióloga (Unisinos), Mestre em Diversidade e Manejo de vida Silvestre (Unisinos), Doutorado sanduiche em Paleoclimatologia (Eberhard Karls Universität, BW, Alemanha),Doutorado em Geociências: Paleobotânica (UFRGS), Especialista em Paisagismo. Membro: NECLIME (Neogene Climate Evolution in Eurasia); ALPP (Associación Latinoamericana de Paleobotánica y Palinología); Grupo Editorial de Biologia e Genética Forense PUCRS. Pesquisador visitante na UFAC (Universidade Federal do Acre, Campus Floresta). Pesquisador: Taxonomia Botânica: paleoclimatologia, criptógamos (liquens, algas, briófitos e pteridófitos) e fanerógamos (angiospermas e gimnospermas). Professora Botânica Forense (PUCRS), Botânica Forense e Evidências Forenses (FAG)  Experiência em gerenciamento ambiental, professora universitária de botânica nos cursos: Biologia, Geografia, Arquitetura, Farmácia, Biologia e Genética Forense.

    A. Hoenisch

    Laura Roberta Pinto Utz

    Professora Orientadora do Curso de Especialização em Biologia e Genética Forense – Departamento de Biodiversidade e Ecologia, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (RS), Brasil